大鼠腎系膜細胞

簡要描述：大鼠腎系膜細胞收到后首先觀察細胞瓶是否完好，培養(yǎng)液是否有漏液、渾濁等現(xiàn)象，若有上述現(xiàn)象發(fā)生請及時和我們。仔細閱讀細胞說明書，了解細胞相關信息，如細胞形態(tài)、所用培養(yǎng)基、血清比例、所需細胞因子等。

產(chǎn)品型號： 1ml/株

所屬分類：大鼠原代細胞

更新時間：2024-12-23

大鼠腎系膜細胞培養(yǎng)條件：DMEM(高糖)+10%FBS，傳代方法：按1:3傳代，凍存條件：90%FBS+10%DMSO，規(guī)格：25T，產(chǎn)品復蘇率：60培養(yǎng)兩天就能清晰看到軸突與樹突，培養(yǎng)時間可長達13-16天，質(zhì)量控制：嚴格經(jīng)過了細菌、真菌、霉菌、病毒（HIV、HBV、HCV）、支原體檢測，產(chǎn)品庫存：現(xiàn)貨供應。

大鼠腎系膜細胞具體操作：

1）.首先不加*，倒掉舊培養(yǎng)基加入少量新培養(yǎng)基洗1-2遍，（這是前奏，即為*步，目的是將漂浮著的死細胞之類盡量洗掉。

2）.然后再加入少量新培養(yǎng)基直接吹打一遍，這一遍是把貼壁不牢固的細胞吹打下來。再用培養(yǎng)基洗一遍，兩次所得懸液混合傳入新瓶。即為第二步（你可以將這些傳入新瓶培養(yǎng)，以與后面*消化過的細胞對比觀察看誰長的更好一點就知道該細胞對*的敏感度了。）

3）.吸干凈瓶內(nèi)剩余液體，加入0.3ml左右的*潤洗一遍，吸掉棄之，再加入1ml左右的*消化。消化的同時置于顯微鏡下觀察，待細胞與細胞之間間隙明顯的時候立即吸掉*與干凈彈頭里備用，加入新培養(yǎng)基開始吹打，吹打2-3遍后吸取懸液于試管或新瓶暫存。用2ml左右新培養(yǎng)基洗一遍與前面的混合。（你也可以傳入新瓶培養(yǎng)，以與后面及前面的做對比。）這是第三步。

4）.然后把前面剛吸出來的*重新加進去瓶里繼續(xù)消化剩余的貼壁牢固的細胞。當然你也可以用新的*，如果你們那比較富裕的話，呵呵。繼續(xù)鏡下觀察，待剩余細胞間隙明顯，細胞獨立開來的時候，吸掉*，加入新培養(yǎng)基吹打。懸液傳入新瓶培養(yǎng)（根據(jù)實際情況你自己把握）。這是第四步。

其實還可以有第五步，對于特別難消化的細胞和對*特別敏感的細胞的話，你可以繼續(xù)加第五步甚至第六步。為了細胞更好的狀態(tài)，更漂亮的樣子，沒辦法，你必須分多批多次消化，這樣才能zui大限度地將*對細胞的損傷降到zui低，保證細胞的狀態(tài)能夠*。

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